Quello che postiamo qui non è un articolo complottista: è uno studio scientifico pubblicato postato online dalla ufficialissima National Library of Medicine da un ente scientifico governativo americano, il National Center for Biotecnology Information di Bethesda: esso ci comunica non solo che il Parlamento Europeo ha autorizzato dal 2018 gli insetti come “nuovo cibo”, ma che esistono già centinaia di allevamenti di essi. Da questi allevamenti vengono gli insetti nel cui “tratto digestivo” gli studiosi hanno tratto la prova che essi sono carichi di parassiti dannosi per l’uomo.
Consiglio, superando gli urti di vomito e l’orrore, di leggerlo: leggete almeno lo Abstract è estremamente istruttivo – anche del futuro che la UE ci prepara d’autorità:
PLoS One. 2019; 14(7): e0219303. Pubblicato online l’8 luglio 2019 doi: 10.1371/journal.pone.0219303
PMCID: PMC6613697 PMID: 31283777
Titolo:
Una valutazione parassitologica degli insetti commestibili e del loro ruolo nella trasmissione di malattie parassitarie all’uomo e agli animali
Remigiusz Gałęcki , Concettualizzazione , Cura dei dati , Analisi formale , Acquisizione di finanziamenti , Indagine , Metodologia , Amministrazione del progetto , Risorse , Software , Convalida , Visualizzazione , Scrittura – bozza originale , Scrittura – revisione e modifica 1, * e Rajmund Sokół , Supervisione , Scrittura – revisione e modifica 2
Pedro L. Oliveira, redattore
Informazioni sull’autore Note sull’articolo Informazioni sul copyright e sulla licenza Esclusione di responsabilità
Abstract
Dal 1 gennaio 2018 è entrato in vigore il Regolamento (UE) 2015/2238 del Parlamento Europeo e del Consiglio del 25 novembre 2015, introducendo il concetto di “nuovi alimenti”, compresi gli insetti e loro parti. Una delle specie di insetti più comunemente utilizzate sono: vermi della farina ( Tenebrio molitor ), grilli domestici ( Acheta domesticus ), blatte (Blattodea) e locuste migratrici ( Locusta migrans). In questo contesto, la questione insondabile è il ruolo degli insetti commestibili nella trasmissione di malattie parassitarie che possono causare perdite significative nel loro allevamento e possono rappresentare una minaccia per l’uomo e gli animali. Lo scopo di questo studio era identificare e valutare le forme di sviluppo dei parassiti che colonizzano gli insetti commestibili negli allevamenti domestici e nei negozi di animali nell’Europa centrale e determinare il potenziale rischio di infezioni parassitarie per l’uomo e gli animali. Il materiale sperimentale comprendeva campioni di insetti vivi (immagini) provenienti da 300 fattorie domestiche e negozi di animali domestici, tra cui 75 allevamenti di vermi della farina, 75 allevamenti di grilli domestici, 75 allevamenti di scarafaggi sibilanti del Madagascar e 75 allevamenti di locuste migratorie. I parassiti sono stati rilevati in 244 (81,33%) su 300 (100%) allevamenti di insetti esaminati. In 206 (68,67%) dei casi, i parassiti individuati erano patogeni solo per gli insetti; in 106 (35,33%) casi, i parassiti erano potenzialmente parassiti per gli animali; e in 91 (30,33%) casi, i parassiti erano potenzialmente patogeni per l’uomo. Gli insetti commestibili sono un serbatoio sottovalutato di parassiti umani e animali. La nostra ricerca indica l’importante ruolo di questi insetti nell’epidemiologia dei parassiti patogeni per i vertebrati. L’esame parassitologico condotto suggerisce che gli insetti commestibili possono essere il più importante vettore di parassiti per gli animali domestici insettivori. Secondo i nostri studi, la ricerca futura dovrebbe concentrarsi sulla necessità di un monitoraggio costante degli allevamenti di insetti studiati per i patogeni, aumentando così la sicurezza di alimenti e mangimi. Gli insetti commestibili sono un serbatoio sottovalutato di parassiti umani e animali. La nostra ricerca indica l’importante ruolo di questi insetti nell’epidemiologia dei parassiti patogeni per i vertebrati. L’esame parassitologico condotto suggerisce che gli insetti commestibili possono essere il più importante vettore di parassiti per gli animali domestici insettivori. Secondo i nostri studi, la ricerca futura dovrebbe concentrarsi sulla necessità di un monitoraggio costante degli allevamenti di insetti studiati per i patogeni, aumentando così la sicurezza di alimenti e mangimi. Gli insetti commestibili sono un serbatoio sottovalutato di parassiti umani e animali. La nostra ricerca indica l’importante ruolo di questi insetti nell’epidemiologia dei parassiti patogeni per i vertebrati. L’esame parassitologico condotto suggerisce che gli insetti commestibili possono essere il più importante vettore di parassiti per gli animali domestici insettivori. Secondo i nostri studi, la ricerca futura dovrebbe concentrarsi sulla necessità di un monitoraggio costante degli allevamenti di insetti studiati per i patogeni, aumentando così la sicurezza di alimenti e mangimi.
introduzione
La crescente domanda di alimenti facilmente digeribili e nutrienti ha contribuito all’emergere di nuove fonti alimentari nella trasformazione agricola. Gli insetti commestibili sono una di queste categorie di alimenti sottoutilizzati con un alto valore nutrizionale [ 1 ]. Gli insetti vengono allevati per il consumo diretto e per l’uso nella produzione di alimenti e mangimi [ 2 ]. Il concetto di “nuovi alimenti”, compresi gli insetti e loro parti, è stato introdotto dal Regolamento (UE) 2015/2238 del Parlamento Europeo e del Consiglio del 25 novembre 2015 sui nuovi alimenti, entrato in vigore il 1° gennaio 2018. La crescente popolarità degli animali esotici ha anche aumentato la domanda di nuovi alimenti. Tuttavia, gli insetti commestibili sono spesso infettati da agenti patogeni e parassiti che causano significative perdite di produzione [ 3]. Questi agenti patogeni rappresentano anche una minaccia indiretta per l’uomo, il bestiame e gli animali esotici. La maggior parte delle imprese di allevamento di insetti nel mondo sono imprese domestiche e in Europa gli insetti commestibili sono raramente prodotti su larga scala. Nell’Unione Europea, l’entomofagia è rara ed è considerata un tabù culturale [ 4 ]. Più di 1900 specie di insetti sono considerate commestibili. Gli insetti commestibili più popolari includono i vermi della farina ( Tenebrio molitor ) [ 5 ], i grilli domestici ( Acheta domesticus ) [ 4 ], gli scarafaggi (Blattodea) [ 6 ] e le locuste migratrici ( Locusta migrans ) [ 4 ].
I vermi della farina sono coleotteri della famiglia Tenebrionidae. I coleotteri adulti sono generalmente lunghi 13-20 mm e le larve hanno una lunghezza di circa 30 mm. Durante il loro breve ciclo vitale di 1-2 mesi, le femmine depongono circa 500 uova. Uno dei maggiori fornitori di vermi della farina al mondo è HaoCheng Mealworm Inc., che produce 50 tonnellate di insetti vivi al mese ed esporta 200.000 tonnellate di insetti essiccati all’anno [ 7 ]. I vermi della farina sono utilizzati nell’alimentazione umana e animale e sono una fonte di cibo popolare per animali domestici esotici, inclusi rettili e insettivori. Il valore nutritivo delle larve della farina è paragonabile a quello della carne e delle uova di gallina [ 8]. I vermi della farina sono facili da conservare e trasportare. Sono abbondanti in nutrienti altamente disponibili e sono considerati una fonte di mangime molto promettente nell’allevamento di pollame e pesce. I vermi della farina possono anche essere somministrati agli animali domestici e al bestiame [ 4 ]. La popolarità del consumo di vermi della farina da parte dell’uomo è in aumento soprattutto in Europa. I vermi della farina degradano efficacemente i rifiuti biologici e la schiuma di polistirene [ 9 ]. I parassiti più comuni dei vermi della farina includono Gregarine spp., Hymenolepis diminuta e gli acari della famiglia Acaridae. I vermi della farina sono insetti modello nella ricerca parassitologica [ 10 – 12 ].
Il grillo domestico ( A. domesticus ) ha una lunghezza fino a 19 mm e il suo ciclo di vita dura 2-3 mesi. È una fonte di cibo per rettili, anfibi e aracnidi allevati in cattività, compresi i ragni della famiglia Theraphosidae. I grilli domestici sono consumati dagli esseri umani sotto forma di polvere o come estratti proteici [ 13 , 14 ]. I grilli interi vengono consumati direttamente in Thailandia [ 1 ]. Questi insetti sono frequentemente infestati da Nosema spp., Gregarine spp. e Steinernema spp.
Gli scarafaggi dell’ordine Blattodea includono lo scarafaggio tedesco ( Blattella germanica ), lo scarafaggio americano ( Periplaneta americana ), lo scarafaggio scavatore cubano ( Byrsotria fumigata ), lo scarafaggio sibilante del Madagascar ( Gromphadorhina portentosa ), lo scarafaggio maculato ( Nauphoeta cinerea ), lo scarafaggio del Turkestan ( Shelfordella lateralis ) e blatta orientale ( Blatta orientalis ). Gli scarafaggi possono vivere fino a 12 mesi e gli individui più grandi raggiungono fino a 8 cm di lunghezza. Gli scarafaggi sono sempre più diffusi nell’alimentazione umana e fanno parte della cucina locale in varie regioni del mondo [ 15 ].
Le locuste migratrici sono membri della famiglia degli acrididi, ordine degli ortotteri. Gli insetti sono lunghi fino a 9 cm e vivono fino a 3 mesi. Le locuste sono consumate da anfibi, rettili e esseri umani, principalmente in Africa e in Asia. Le locuste contengono fino al 28% di proteine e l’11,5% di grassi, compreso fino al 54% di grassi insaturi [ 16 ]. Nosema spp. e Gregarine spp. sono i parassiti delle locuste più diffusi [ 17 ].
Lo scopo di questo studio era identificare e valutare le forme di sviluppo dei parassiti che colonizzano gli insetti commestibili negli allevamenti domestici e nei negozi di animali nell’Europa centrale e determinare il potenziale rischio di infezioni parassitarie per l’uomo e gli animali.
La minacciosa pubblicità del World Economic Forum: “Se non ti sembra appetitoso,è perché non hai abbastanza fame”
Materiali e metodi
Materiali
Il materiale sperimentale comprendeva campioni di insetti vivi (immagini) provenienti da 300 allevamenti domestici e negozi di animali domestici, tra cui 75 allevamenti di vermi della farina, 75 allevamenti di grilli domestici, 75 allevamenti di scarafaggi sibilanti del Madagascar e 75 allevamenti di locuste migratorie da Cechia, Germania, Lituania, Polonia, Slovacchia e Ucraina. I proprietari/allevatori di fattorie domestiche e colture di negozi di animali hanno autorizzato lo studio da condurre nei loro allevamenti di insetti. Gli studi sono stati condotti negli anni 2015-2018. Sono state testate fino a 3 aziende agricole da un’unica località (ad es. città). Il bestiame agricolo è stato acquistato da fornitori in Europa, Asia e Africa. Quaranta insetti sono stati ottenuti da ogni allevamento di vermi della farina e grilli e sono stati raggruppati in 4 campioni di 10 insetti ciascuno. Dieci insetti sono stati campionati da ogni allevamento di scarafaggi e locuste e sono stati analizzati individualmente.
Metodologia
Gli insetti sono stati immobilizzati inducendo un coma freddo ad una temperatura di -30°C per 20 minuti. L’ibernazione era considerata efficace quando zampe, mandibole e antenne non rispondevano agli stimoli tattili. Gli insetti in letargo sono stati decapitati e sezionati per raccogliere i tratti digestivi. I tratti digestivi sono stati macinati in un setaccio ed esaminati mediante il metodo di flottazione di Fulleborn con la soluzione di Darling (soluzione satura di NaCl al 50% e glicerolo al 50%). I campioni sono stati centrifugati a 3500 x per 5 minuti. Sono stati ottenuti tre campioni da ogni campione e sono stati esaminati al microscopio ottico (a 200x, 400x e 1000x ingrandimenti). Le restanti parti del corpo sono state esaminate per la presenza di larve parassite al microscopio stereoscopico Leica M165C (a 7. ingrandimento 2x-120x) Le restanti parti del corpo sono state analizzate secondo il metodo proposto da Kirkor con alcune modifiche, macinando le parti del corpo in un mortaio con una corrispondente quantità di acqua e 0,5 ml di etere. Le sospensioni risultanti sono state filtrate in provette per separare le particelle grandi e sono state centrifugate a 3500x per 5 minuti. Dopo aver allentato il tappo dei detriti, i primi tre strati di sospensione sono stati scartati. Sono stati ottenuti tre campioni, che sono stati analizzati secondo la procedura sopra descritta. I parassiti sono stati identificati a livello di genere/specie sulla base di parametri morfologici e morfometrici con l’uso di un sistema di acquisizione immagini Olympus e del programma Leica Application Suite basato sulle fonti di riferimento in Pubmed [ macinando parti del corpo in un mortaio con una quantità corrispondente di acqua e 0,5 ml di etere. Le sospensioni risultanti sono state filtrate in provette per separare le particelle grandi e sono state centrifugate a 3500x per 5 minuti. Dopo aver allentato il tappo dei detriti, i primi tre strati di sospensione sono stati scartati. Sono stati ottenuti tre campioni, che sono stati analizzati secondo la procedura sopra descritta. I parassiti sono stati identificati a livello di genere/specie sulla base di parametri morfologici e morfometrici con l’uso di un sistema di acquisizione immagini Olympus e del programma Leica Application Suite basato sulle fonti di riferimento in Pubmed [ macinando parti del corpo in un mortaio con una quantità corrispondente di acqua e 0,5 ml di etere. Le sospensioni risultanti sono state filtrate in provette per separare le particelle grandi e sono state centrifugate a 3500x per 5 minuti. Dopo aver allentato il tappo dei detriti, i primi tre strati di sospensione sono stati scartati. Sono stati ottenuti tre campioni, che sono stati analizzati secondo la procedura sopra descritta. I parassiti sono stati identificati a livello di genere/specie sulla base di parametri morfologici e morfometrici con l’uso di un sistema di acquisizione immagini Olympus e del programma Leica Application Suite basato sulle fonti di riferimento in Pubmed [ i primi tre strati di sospensione sono stati scartati. Sono stati ottenuti tre campioni, che sono stati analizzati secondo la procedura sopra descritta. I parassiti sono stati identificati a livello di genere/specie sulla base di parametri morfologici e morfometrici con l’uso di un sistema di acquisizione immagini Olympus e del programma Leica Application Suite basato sulle fonti di riferimento in Pubmed [ i primi tre strati di sospensione sono stati scartati. Sono stati ottenuti tre campioni, che sono stati analizzati secondo la procedura sopra descritta. I parassiti sono stati identificati a livello di genere/specie sulla base di parametri morfologici e morfometrici con l’uso di un sistema di acquisizione immagini Olympus e del programma Leica Application Suite basato sulle fonti di riferimento in Pubmed [18-36 ] . _ I parassiti sono stati identificati a livello di specie mediante colorazione Ziehl-Neelsen [ 37 ]. Ai proprietari di allevamenti in cui sono stati rilevati parassiti umani è stato consigliato di eliminare il loro bestiame. I proprietari degli allevamenti sono stati intervistati con l’uso di un questionario per ottenere informazioni sull’origine degli insetti (per determinare se lo stock fosse integrato con insetti provenienti da altri allevamenti, se l’allevamento fosse un habitat chiuso, se lo stock fosse ottenuto solo dall’Europa o anche dall’Asia/Africa), nutrizione degli insetti (se gli insetti sono stati nutriti con mangimi specializzati, prodotti freschi, scarti di cucina o fonti di mangime raccolte localmente), contatto con altri animali o feci animali.
analisi statistica
La prevalenza delle specie parassite è stata determinata per ogni specie di insetto. I dati sono stati testati per la distribuzione normale con il test di Kolmogorov-Smirnov. Le ipotesi di linearità e normalità sono state testate prima dell’analisi statistica. La linearità è stata analizzata sulla base della distribuzione bidimensionale delle variabili valutate con l’uso di istogrammi e grafici di probabilità normali dei residui. La significatività delle correlazioni tra specie di insetti e dati del questionario è stata analizzata in un modello di regressione logistica, dove la variabile dipendente era dicotomica (0 o 1, presenza/assenza di parassiti) e le variabili indipendenti erano: provenienza degli insetti (insetti acquistati in Europa solo/insetti importati da Asia e Africa), Sistema di rotazione degli stock di insetti (solo insetti dell’allevamento valutato- rotazione chiusa/l’allevamento è stato integrato con insetti di altri allevamenti- rotazione aperta), alimentazione (insetti alimentati solo con prodotti freschi o mangimi specializzati/insetti alimentati con scarti di cucina) e contatto diretto/indiretto con animali (sì/no). Le correlazioni tra i parassiti identificati sono state analizzate con l’uso della Q di Yule e della V di Cramer, a seconda del numero delle variabili valutate. Le associazioni esaminate erano deboli quando il valore di V/Q si avvicinava a 0, e le correlazioni erano più forti quando V/Q si avvicinava a +1/-1. I risultati sono stati elaborati statisticamente nel programma Statistica 13.1 con un’applicazione medica StatSoft. alimentazione (insetti alimentati solo con prodotti freschi o mangimi specializzati/insetti alimentati con scarti di cucina) e contatto diretto/indiretto con gli animali (sì/no). Le correlazioni tra i parassiti identificati sono state analizzate con l’uso della Q di Yule e della V di Cramer, a seconda del numero delle variabili valutate. Le associazioni esaminate erano deboli quando il valore di V/Q si avvicinava a 0, e le correlazioni erano più forti quando V/Q si avvicinava a +1/-1. I risultati sono stati elaborati statisticamente nel programma Statistica 13.1 con un’applicazione medica StatSoft. alimentazione (insetti alimentati solo con prodotti freschi o mangimi specializzati/insetti alimentati con scarti di cucina) e contatto diretto/indiretto con gli animali (sì/no). Le correlazioni tra i parassiti identificati sono state analizzate con l’uso della Q di Yule e della V di Cramer, a seconda del numero delle variabili valutate. Le associazioni esaminate erano deboli quando il valore di V/Q si avvicinava a 0, e le correlazioni erano più forti quando V/Q si avvicinava a +1/-1. I risultati sono stati elaborati statisticamente nel programma Statistica 13.1 con un’applicazione medica StatSoft. e le correlazioni erano più forti quando V/Q si avvicinava a +1/-1. I risultati sono stati elaborati statisticamente nel programma Statistica 13.1 con un’applicazione medica StatSoft. e le correlazioni erano più forti quando V/Q si avvicinava a +1/-1. I risultati sono stati elaborati statisticamente nel programma Statistica 13.1 con un’applicazione medica StatSoft.
Risultati
Prevalenza
Forme di sviluppo parassitarie sono state rilevate in 244 (81,33%) su 300 (100%) allevamenti di insetti esaminati. In 206 (68,67%) dei casi, i parassiti individuati erano patogeni solo per gli insetti; in 106 (35,33%) casi, i parassiti erano potenzialmente parassiti per gli animali; e in 91 (30,33%) casi, i parassiti erano potenzialmente patogeni per l’uomo. Nosema spp. le spore sono state rilevate in 27 (36,00%) allevamenti di grilli e 35 (46,67%) allevamenti di locuste. La presenza di Cryptosporidium spp. è stato osservato in 12 (16%) allevamenti di vermi della farina, 5 (6,67%) allevamenti di grilli, 13 (17,33%) allevamenti di blatte e 4 (5,33%) allevamenti di locuste. Quarantaquattro (58,67%) allevamenti di vermi della farina, 30 (40,00%) allevamenti di grilli, 57 (76%) allevamenti di scarafaggi e 51 (68,00%) allevamenti di locuste sono stati infestati da Gregarine spp., tra cuiSteganorhynchus dunwodyii , Hoplorhynchus acanthatholius , Blabericola haasi , Gregarina blattarum , G. niphadrones , Gregarina cuneata e Gregarina polymorpha . Isospora spp. sono stati rilevati in 7 (9,33%) allevamenti di vermi della farina, 4 (5,33%) allevamenti di grilli, 9 (12,00%) allevamenti di blatte e 8 (10,67%) allevamenti di locuste. Undici (14,67%) allevamenti di vermi della farina, 13 (17,33%) allevamenti di blatte e 9 (12,00%) allevamenti di locuste sono stati infestati da Balantidium spp. compresi B. coli e B. blattarum . La presenza di Entamoeba spp., tra cui E. coli ,E. dispar , E. hartmanii e E. histolytica , è stato determinato in 9 (12%) allevamenti di vermi della farina, 14 (18,67%) allevamenti di blatte e 4 (5,33%) allevamenti di locuste. Diciassette (22,67%) allevamenti di blatte sono stati colonizzati da Nyctotherus spp., tra cui N. ovalis e N. periplanetae . I cisticercoidi della tenia, tra cui Hymenolepis nana , H. diminuta e Raillietina spp., sono stati rilevati in 9 (12%) allevamenti di vermi della farina, 3 (4%) allevamenti di grilli, 4 (5,33%) allevamenti di blatte e 3 (4,00%) allevamenti di locuste. I nematodi dell’ordine Gordiidea hanno colonizzato 6 (8,00%) allevamenti di grilli e locuste. Hammerschmidtiella diesignè stato rilevato in 35 (46,67%) allevamenti di blatte. Steinernema spp. è stato identificato in 22 (29,33%) allevamenti di grilli e Pharyngodon spp. in 14 (18,67%) allevamenti di locuste. La presenza di Physaloptera spp. è stato osservato in 4 (5,4%) allevamenti di vermi della farina, 2 (2,67%) allevamenti di grilli, 9 (12,00%) allevamenti di blatte e 7 (9,33%) allevamenti di locuste. Cinque (6,67%) allevamenti di vermi della farina e 7 (9,33%) allevamenti di scarafaggi sono stati infestati da Spiruroidea. Thelastomidae spp. è stato rilevato in 10 (13,33%) allevamenti di grilli e locuste. Thelastomaspp. è stato identificato in 58 (77,33%) allevamenti di blatte. Acanthocephala sono stati osservati in 2 (2,67%) allevamenti di vermi della farina e 3 (4,00%) allevamenti di blatte. Due allevamenti di blatte (2,67%) sono stati infestati da Pentastomida. La presenza di Acaridae, compresi gli acari della polvere domestica, è stata osservata in 35 (46,67%) allevamenti di vermi della farina, 15 (20,00%) allevamenti di blatte e 7 (9,33%) allevamenti di locuste. Nel gruppo di campioni raccolti da allevamenti di vermi della farina, Cryptosporidium spp. sono stati osservati in 37 (12,33%) campioni, Gregarine spp. sono stati rilevati in 99 (33,00%) campioni, Isospora spp.—in 12 (4%) campioni, Entamoeba spp.—in 12 (4,00%) campioni, Balantidium spp.—in 14 (4,67%) campioni, cisticercoidi—in 18 (6,00%) campioni, Faringodontespp.—in 10 (3%) dei campioni, Physaloptera spp.—in 15 (5,00%) campioni, Spiruroidea —in 6 (2,00%) campioni, Acanthocephala spp.—in 2 (0,67%) e Acaridae in 80 ( 26,67%) campioni. Nel gruppo di campioni raccolti da allevamenti di grilli, Nosema spp. sono stati identificati in 74 (24,67%) campioni, Cryptosporidium spp.—in 5 (1,67%) campioni Isospora spp.—in 8 (2,67%) campioni, Gregarine spp.—in 72 (24,00%) campioni, cisticercoidi—in 4 ( 1,33%), Physaloptera spp.-in 4 (1,33%) campioni, Steinernemaspp.-in 11 (3,67%) campioni e nematodi dell’ordine Gordiidea-in 19 (6,33%) campioni. Nel gruppo di campioni ottenuti da allevamenti di blatte, la presenza di Cryptosporidium spp. è stato determinato in 89 (11,87%) campioni, Gregarine spp.—in 236 (31,47%) campioni, Isospora spp.—in 16 (2,13%) campioni, Nyctotherus spp.—in 57 (7,60%) campioni, Entamoeba spp.— in 34 (4,53%) campioni, Balantidium spp.—in 35 (4,67%) campioni, cisticercoidi—in 4 (0,53%) campioni, Pharyngodon spp.—in 20 (2,67%) campioni, Physaloptera spp.—in 23 (3,07 %) campioni %) campioni, Spiruroidea—in 14 (1,87%) campioni, Thelastoma spp.—in 270 (36,00%) campioni,H. diesigni — in 143 (19,07%) campioni, Acanthocephala spp. — in 5 (0,67%) campioni, Pentastomida spp. — in 5 (0,67%) campioni e Acaridae — in 29 (3,87%) campioni. I seguenti parassiti sono stati identificati negli allevamenti di locuste: Nosema spp.-in 125 (16,67%) campioni, Cryptosporidium spp.-in 13 (1,73%) campioni, Gregarine spp.-in 180 (24,00%) campioni, Isospora spp.-in 15 (2,00%) campioni, Entamoeba spp. in 9 (1,20%) campioni, Balantidium spp.—in 14 (1,87%) campioni, cisticercoidi—in 15 (2,00%) campioni, Physaloptera spp.—in 17 (2,27%) campioni, Steinernemaspp. – in 31 (4,13%) campioni, nematodi dell’ordine Gordiidea – in 7 (0,93%) campioni e Acaridae – in 31 (4,13%) campioni. Sono stati inseriti i risultati dettagliati dell’esame parassitologicoTabella 1.
Tabella 1
Tipo/Specie e forme di sviluppo dei parassiti riscontrati negli insetti esaminati nei campioni collettivi/individuali esaminati a seconda del luogo di rilevamento.
| Parassita (forme di sviluppo) | Scarabeo della farina | Grillo domestico | Scarafaggio sibilante del Madagascar | Locusta migratrice | ||||
| gt | rb | gt | rb | gt | rb | gt | rb | |
| Nosema spp. (spore) | – | – | 74 | – | – | – | 125 | – |
| Criptosporidio spp. (oocisti) | 31 | 10 | 5 | 2 | 57 | 35 | 13 | 4 |
| Gregarine spp. (oocisti, sporozoiti) | 99 | – | 72 | – | 236 | – | 180 | – |
| Isospora spp. (oocisti) | 3 | 12 | 1 | 8 | 6 | 16 | 1 | 15 |
| Balantidio spp. (ameba, cisti) | 1 | 14 | – | – | 29 | 8 | 5 | 14 |
| Entamoeba spp. (ameba, cisti) | 3 | 11 | – | – | 30 | 7 | 1 | 9 |
| Nyctotherus spp. (ameba, cisti) | – | – | – | – | 57 | 2 | – | – |
| Cestoda (uova, cisticercoidi) | 8 | 22 | – | 4 | 3 | 4 | 2 | 15 |
| Gordiidae spp (cisti, giovani) | – | – | – | 19 | – | – | 16 | – |
| H. diesigni (forme adulte, uova) | – | – | – | – | 143 | – | – | – |
| Faringodonte spp. (larve L3) | – | 13 | – | – | – | 22 | – | – |
| Physaloptera spp. (larve L3) | – | 19 | – | 4 | – | 42 | – | 17 |
| Spiruroidea (larve L3) | – | 8 | – | – | – | 14 | – | – |
| Thelastomatidae (forme adulte, uova) | – | – | 47 | – | – | – | 31 | – |
| Steinernema spp. (forme adulte) | – | – | – | 11 | – | – | – | 17 |
| Thelastomi spp. (forme adulte, uova) | – | – | – | – | 270 | – | – | – |
| Acanthocephala spp. (cistacanti) | – | 2 | – | – | – | 5 | – | – |
| Pentastomida (ninfe) | – | – | – | – | – | 5 | – | – |
| Acaridae (uova, ninfe, forme adulte) | 4 | 80 | – | – | 2 | 29 | 1 | 31 |
gt: tratto gastrointestinale; rb: resto del corpo
Probabilità di insorgenza del parassita
Il rischio di infezioni da Cestoda, Acanthocephala e Acaridae era significativamente più alto negli insetti importati dall’Africa e dall’Asia rispetto agli insetti acquistati da fornitori europei. Gli allevamenti il cui bestiame era integrato con insetti provenienti da altri allevamenti erano più frequentemente colonizzati da Nosema spp., Isospora spp., Cryptosporidium spp., Entamoeba spp., Cestoda, Pharyngodon spp., Gordius spp., Physaloptera spp., Thelastoma spp. e H. diesign rispetto agli allevamenti chiusi. Il rischio di infezione da Cryprosporidium spp., Gregarine spp, Balantidium spp,Entamoeba spp., Steinernema spp., Gordiidea, H. diesign e Acaridae era maggiore negli insetti nutriti con scarti di cucina e fonti di mangime raccolte localmente rispetto agli insetti nutriti solo con prodotti freschi o mangimi specializzati. Gli insetti che sono entrati in contatto diretto o indiretto con gli animali erano a maggior rischio di esposizione a Isospora spp., Cryptosporidium spp., Cestoda, Pharyngodon spp., Physaloptera spp., Thelastoma spp. e H. diesigni , ma a minor rischio di esposizione a Nyctotherus spp. Sono stati inseriti i risultati statisticamente significativi della regressione logisticaTavolo 2.
Tavolo 2
Modello di regressione logistica, che mostra relazioni statisticamente significative tra le specie parassite e l’origine degli insetti, il sistema di rotazione degli stock di insetti, il tipo di alimentazione e il contatto con gli animali.
| Nosema spp. | rotazione | <0,000001 | 2.28 | 0.18 | 33,99 | <0,000001 | 2,90 | 2.03-4.14 |
| Isospora spp. | rotazione | 0.000043 | 28.88 | 0.31 | 10.45 | 0.0012 | 2.74 | 1.49-5.06 |
| animali | 12.03 | 0,32 | 3,95 | 0,047 | 1.87 | 1.01-3.48 | ||
| Cryprosporidium spp. | rotazione | 0.00001 | 14.54 | 0.22 | 15.53 | 0.00002 | 5.11 | 1.03-14.65 |
| alimentazione | 17.76 | 0.19 | 19.22 | 0.0013 | 10.21 | 0,81-6,45 | ||
| animali | 4.03 | 0,34 | 7.81 | 0,001 | 3.62 | 1.95-12.83 | ||
| Gregarine spp. | alimentazione | 0.000001 | 11.85 | 0.11 | 21.40 | 0,000004 | 1.65 | 1.33-2.04 |
| Nyctotherus spp. | animali | 0,020 | 49.02 | 0,29 | 8.29 | 0,004 | 0,44 | 0,25-0,77 |
| Balantidio spp. | alimentazione | 0.000001 | 6.43 | 0,32 | 15.63 | 0,000072 | 3.52 | 1.69-6.57 |
| Entamoeba spp. | rotazione | 0.000022 | 4.50 | 0,54 | 5.78 | 0,016 | 0,27 | 0,095-0,79 |
| alimentazione | 3.58 | 0,34 | 11.03 | 0,000098 | 3.13 | 1.60-6.13 | ||
| Cestoda | origine | 0,000064 | 11.66 | 1.06 | 4.71 | 0.03 | 10.07 | 1.25-81.05 |
| rotazione | 8.38 | 4.46 | 4.59 | 0,035 | 2.92 | 1.08-7.92 | ||
| animali | 2.48 | 1,50 | 6.46 | 0.011 | 18.54 | 1.95-177.14 | ||
| Faringodonte spp. | rotazione | 0.000001 | 8.24 | 0,63 | 4.25 | 0,040 | 0,27 | 0,078-0,93 |
| animali | 11.21 | 0,73 | 14.10 | 0.00017 | 15.73 | 3.73-66.31 | ||
| Steinernema spp. | alimentazione | 0,047 | 15.26 | 0,28 | 5.46 | 0,019 | 1.94 | 1.11-3.39 |
| Gordiidae | rotazione | 0.000001 | 1.44 | 0.41 | 5.87 | 0.02 | 2.69 | 1.21-5.97 |
| alimentazione | 4.89 | 1.03 | 18.67 | 0.000016 | 87,54 | 11.51-665.54 | ||
| Physaloptera spp. | rotazione | 0.000001 | 12.28 | 0,36 | 8.62 | 0,0033 | 0,35 | 0,17-0,70 |
| animali | 7.45 | 0,29 | 28.18 | <0,000001 | 4.75 | 2.67-8.45 | ||
| Thelastomi spp. | rotazione | 0,00087 | 33.09 | 0.19 | 4.61 | 0,031 | 1.51 | 1.04- 2.21 |
| animali | 9.44 | 0.16 | 4.89 | 0,0002 | 1.26 | 1.26-2.43 | ||
| Hammerschmidtiella diesign | rotazione | <0,000001 | 11.15 | 0.22 | 14.09 | 0.00017 | 2.32 | 1.49-3.59 |
| alimentazione | 7.64 | 0.22 | 12.41 | 0.00042 | 2.18 | 1.41-3.73 | ||
| animali | 5.82 | 0,20 | 7.47 | 0,0062 | 1.75 | 1.17-2.61 | ||
| Acanthocephala | origine | 0.00001 | 14.23 | 0,55 | 5.11 | 0.02 | 9.11 | 1.67-73.01 |
| Acaridi | origine | 0.000001 | 5,89 | 0,20 | 13.72 | 0.00021 | 2.08 | 1.41-3.06 |
| alimentazione | 7.43 | 0,20 | 11.52 | 0,00069 | 1,99 | 1.34-2.96 |
X 2 : test del chi-quadrato; W : statistica di Wald; IC 95% —Intervallo di confidenza 95%; Origine: 0-gli esemplari nell’allevamento provenivano dall’Europa, 1- individui riproduttori importati dall’Asia o dall’Africa; Rotazione: 0—individui provenienti da allevamenti a rotazione chiusa, 1—individui provenienti da allevamenti a rotazione aperta; Alimentazione: 0—insetti nutriti con prodotti freschi o cibo, 1—insetti nutriti con rifiuti; Animali: 0—nessun contatto con animali, 1—contatto con animali. H. diesigni — Hammerschmidtiella diesigni .
Coinvasioni
Sono state osservate correlazioni significative tra la presenza di Nosema spp. e Isospora spp. (V = 0,75), Gregarine spp. (Q = −0,27) Steinernema spp. (Q = 0,42) e Gordiidae spp (Q = 0,45). La presenza di Isospora spp. era anche significativamente correlato con Gregarine spp. (Q = -0,22), cestoda (Q = 0,63), Gordiidae spp. (Q = 0,73) Thelastoma spp. (Q = 0,96). La presenza di Nyctotherus spp. era correlato con Spiruroidea (Q = 0,55), Thelastoma spp. (Q = 0,52) e H. diesign (Q = 0,18). Sono state osservate correlazioni tra Gregarine spp. eHymenolepis minuto (Q = 0,48), Pharyngodon spp. (Q = 0,30), Steinernema spp. (Q = 0,33), Physaloptera spp. (Q = 0,32), Spiruroidea. (Q = 0,44), Thelastoma spp. (Q = 0,51), H. diesigni (Q = 0,31) e Acanthocephala (Q = 0,44). La presenza di Cryptosporidium spp. era significativamente correlato con Balantidium spp. (Q = 0,21), Entamoeba spp. (Q = 0,33), Nyctotherus spp. (Q = −0,41), H. diesign (Q = 0,49) e Acaridae (Q = 0,17).
Discussione
A causa della mancanza dell’obbligo di registrazione, non siamo attualmente in grado di stimare il numero esatto di tali aziende agricole nell’area esaminata. Il numero di allevamenti ottenuti per l’esperimento è risultato da un numero minimo di campioni calcolato indicativamente. Per ottenere i risultati più affidabili da una singola località (ad es. città), abbiamo testato fino a 3 allevamenti. La selezione delle specie di insetti per la ricerca è il risultato della diffusione di questi animali tra gli allevatori. Nel caso in cui abbiamo dimostrato che gli insetti provenivano dallo stesso fornitore, non abbiamo continuato ulteriori ricerche.
Le domande del sondaggio riguardanti gli allevamenti di insetti testati sono relative alle attività osservate praticate dagli allevatori. Gli allevatori che desiderano creare o ampliare le proprie aziende agricole spesso ordinano insetti dai paesi di origine o da luoghi in cui l’importazione di tali alimenti è più economica che dall’Europa. A nostro avviso, un tale fenomeno rappresenta una grande minaccia per il fatto che potrebbe esserci il rischio di catturare animali dall’ambiente e quindi introdurre nuovi parassiti, sia patogeni per gli insetti che per l’uomo e gli animali. Alcuni allevatori dilettanti non sono interessati alla qualità dei mangimi introdotti in azienda. Ottengono cibo per insetti dall’ambiente (foraggi verdi, alberi da frutto selvatici) o usano gli avanzi dell’alimentazione di altri animali. Gli insetti commestibili possono anche avere un contatto diretto o indiretto con gli animali. Tra le pratiche possiamo includere il rideposito degli insetti negli allevamenti dopo che l’animale non li ha mangiati. Questi insetti che si muovono nell’habitat animale (es. terrari) possono introdurre meccanicamente potenziali patogeni specifici degli animali.
Durante la ricerca in singoli allevamenti, abbiamo osservato pratiche non etiche di singoli allevatori, come nutrire insetti con feci di animali da un negozio di animali, nutrire insetti con cadaveri di animali più piccoli o nutrire insetti con cibo ammuffito e persino carne cruda. Queste pratiche riducono significativamente la qualità del prodotto finale e minano la sicurezza microbiologica/parassitologica di tali alimenti. Attualmente, tuttavia, non esistono normative riguardanti le condizioni zooigieniche e il benessere di questi animali in quanto potenziali animali destinati all’alimentazione. Sebbene la ricerca sia stata condotta su allevamenti di insetti amatoriali, la maggior parte non è risultata gravemente difettosa. L’allevamento di insetti commestibili effettuato in luoghi non destinati a questo scopo (case) può comportare un ulteriore pericolo per l’uomo. Nel corso dello studio, abbiamo registrato singoli casi di diffusione di insetti dalle fattorie, che hanno provocato infestazioni di stanze, ad es. da scarafaggi o grilli. Un altro esempio è la possibilità di trasmissione di parassiti comeCriptosporidio spp. aerogenicamente sull’uomo, quindi se gli allevamenti sono ben protetti o c’è una mancanza di igiene a contatto con gli insetti, possono verificarsi tali invasioni.
Parassiti patogeni per gli insetti
I campioni di allevamento analizzati sono stati colonizzati da forme evolutive di parassiti specifici degli insetti, tra cui Nosema spp, Gregarine spp., Nyctotherus spp., Steinernema spp., Gordiidae, H. diesign , Thelastomidae e Thelastoma spp. Questi agenti patogeni costituiscono la flora parassitaria più diffusa e le infezioni massicce possono compromettere la salute degli insetti e diminuire i profitti delle aziende agricole [ 38 , 39 ]. Secondo Van der Geest et al. [ 40 ] e Johny et al. [ 41], i suddetti patogeni sono stati implicati come pseudo-parassiti dell’uomo e degli animali. Tuttavia, l’impatto dei parassiti specifici degli insetti sugli esseri umani non è stato ancora completamente chiarito. Pong et al. [ 42 ] ha sostenuto che Gregarine spp., un parassita specifico degli scarafaggi, potrebbe causare l’asma negli esseri umani. I risultati dell’indagine condotta nel nostro studio indicano che l’allevamento di insetti può aumentare l’esposizione umana a patogeni e allergeni [ 43 , 44 ].
La nosemosi è una malattia causata da parassiti microsporidi, e può compromettere la salute di grilli e locuste. Tuttavia, i parassiti del nosema controllano anche le popolazioni di grilli e locuste nell’ambiente naturale [ 45 – 47 ]. Lange e Wysiecki [ 48 ] hanno scoperto che Nosema locustae può essere trasmesso da locuste selvatiche fino a una distanza di 75 km. Questo parassita si trasmette anche facilmente tra i singoli insetti, il che può contribuire alla diffusione delle infezioni negli allevamenti di insetti. Johnson e Pavlikova [ 49 ] hanno riportato una correlazione lineare tra il numero di Nosema spp. spore nelle locuste e una diminuzione del consumo di sostanza secca. I risultati del nostro studio indicano che Nosemaspp. le infezioni possono ridurre i profitti nell’allevamento di insetti.
Gregarine spp. sono protisti parassiti che colonizzano l’apparato digerente e le cavità corporee degli invertebrati. Secondo Kudo [ 50 ], le gregarine sono microrganismi commensali non patogeni, ma recenti ricerche indicano che questi protisti sono patogeni per gli insetti. Questi microrganismi utilizzano i nutrienti ingeriti dall’ospite, compromettono la funzione immunitaria dell’ospite e danneggiano le pareti delle cellule ospiti [ 41 ]. Le massicce infestazioni possono portare al blocco intestinale negli insetti [ 38 ]. Lopes e Alves [ 39 ] hanno scoperto che gli scarafaggi sono stati infettati da Gregarinespp. erano caratterizzati da addomi gonfi, movimenti più lenti, corpi oscurati e odore putrido indicativo di setticemia. È stato anche scoperto che le gregarine compromettono la riproduzione, accorciano il ciclo di vita e aumentano la mortalità negli insetti [ 38 , 51 , 52 ]. Uno studio sulle libellule ha rivelato che Gregarine spp. può diminuire il contenuto di grassi e la forza muscolare negli insetti [ 52 ]. Johny et al. [ 41 ] hanno dimostrato che il metronidazolo e la griseofluvina possono diminuire la Gregarine spp. conta negli insetti. I risultati presentati da Johny et al. [ 41 ] può essere utilizzato per sviluppare strategie di gestione dei parassiti e ridurre al minimo gli effetti negativi di Gregarinespp. negli allevamenti di insetti. Lopes e Alves [ 39 ] hanno dimostrato che gli scarafaggi infettati da Gregarine spp. erano più suscettibili a Metarhizium anisopliae e triflumuron, il che potrebbe implicare che gli insetti malati sono più sensibili ad altri agenti patogeni. Una revisione della letteratura suggerisce che Gregarine spp. può influire negativamente sulla salute degli insetti allevati [ 38 , 39 , 41 , 51 , 52 ].
Nyctotherus spp. è un parassita o un endosimbionte che colonizza il sistema intestinale degli insetti. Gijzen et al. [ 53 ] hanno trovato una forte correlazione tra la dimensione della popolazione di N. ovalis e l’attività digestiva della carbossimetilcellulasi e della carta da filtro nell’intestino degli scarafaggi, che era correlata con la capacità di questi insetti di produrre metano. I risultati del nostro studio indicano che il ciliato N. ovalis dovrebbe essere considerato come microflora commensale del tratto gastrointestinale della blatta. Nyctotherus spp. avevano meno probabilità di essere rilevati in insetti che avevano avuto contatti precedenti con animali. Quanto sopra potrebbe implicare che gli insetti i cui tratti digestivi sono colonizzati da questi parassiti siano più facilmente consumati dagli animali.Nyctotherus ovalis è raramente patogeno per gli animali. Satbige et al. [ 54 ] riportato su due tartarughe in cui l’ infezione da N. ovalis ha causato diarrea, disidratazione e perdita di peso.
I Gordiidae, noti anche come vermi di crine di cavallo, sono nematodi parassiti con una lunghezza fino a 1,5 m che colonizzano gli invertebrati. Quando vengono consumate dagli insetti, le larve parassite penetrano nella parete intestinale e sono avvolte da cisti protettive all’interno dell’intestino. Gordio spp. sono generalmente specifici degli insetti, ma questi nematodi sono stati rilevati anche nell’uomo e negli animali. In letteratura sono stati descritti diversi casi di parassitismo e pseudo-parassitismo da vermi gordiidi provenienti da varie località, tra cui Francia, Italia, Baviera, Dalmazia, Africa orientale, Africa sud-orientale, Africa occidentale, Transvaal, Cile, Stati Uniti e Canada [ 55 ]. . I vermi di crine sono stati identificati anche nel vomito e nelle feci [ 56 , 57]. Tuttavia, nessuna delle invasioni parassitarie descritte era patogena per l’uomo. Nel presente studio, i parassiti sono stati rilevati negli insetti nutriti con scarti di cucina o fonti di cibo raccolte localmente.
Hammerschmidtiella diesign , Thelastoma spp. e Thelastomatidae sono nematodi specifici degli invertebrati. I nematodi che colonizzano il tratto digerente degli insetti sono generalmente considerati organismi commensali. Taylor [ 58 ] ha dimostrato che Leidynema spp. esercitato un effetto negativo sui tessuti hindgut negli insetti. Analogamente ai patogeni identificati nel nostro studio, Leidynema spp. appartengono alla famiglia Thelastomatidae. Capinera [ 59 ] ha dimostrato che questi nematodi possono aumentare la mortalità negli allevamenti di blatte. Nel nostro studio, insetti colonizzati da H. diesigni e Thelastoma spp. erano caratterizzati da un contenuto di tessuto adiposo inferiore. McCallister [ 60] hanno riportato una maggiore prevalenza di nematodi H. diesigni e T. bulhoes negli scarafaggi femmine e adulti, ma non hanno osservato variazioni significative nella conta differenziale degli emociti o nel peso specifico dell’emolinfa [ 60 ].
Steinernema spp. è un nematode entomopatogeno la cui patogenicità è legata alla presenza di batteri simbiotici nell’intestino parassita. Questi nematodi sono utilizzati in agricoltura come agenti di controllo biologico dei parassiti delle colture [ 61 ], che possono promuovere la diffusione dell’infezione ad altri insetti. Nel nostro studio, gli insetti infetti da Steinernema spp. probabilmente venivano nutriti con piante contaminate da uova di parassita.
Parassiti patogeni per l’uomo e gli animali
Criptosporidio spp. sono parassiti che colonizzano l’apparato digerente e respiratorio di oltre 280 specie di vertebrati e invertebrati. Sono stati collegati a molte malattie animali che comportano diarrea cronica [ 62-64 ] . Secondo la letteratura, gli insetti possono fungere da vettori meccanici di questi parassiti. Le mosche possono essere vettori di Cryptosporidium spp. che trasportano le oocisti nel tratto digerente e contaminano il cibo [ 65 , 66 ]. Anche gli scarabei stercorari [ 67 ] e gli scarafaggi [ 68 ] possono agire come vettori meccanici di questi parassiti nell’ambiente. Tuttavia, la prevalenza di Cryptosporidiumspp. negli insetti commestibili non è stato documentato in letteratura. Nel nostro studio, Cryptosporidium spp. sono stati rilevati nel tratto digestivo e in altre parti del corpo di tutte le specie di insetti valutate. A nostro avviso, gli insetti sono un vettore sottovalutato di Cryptosporidium spp., e contribuiscono in modo significativo alla diffusione di questi parassiti.
Isospora spp. sono protozoi cosmopoliti della sottoclasse Coccidia che causano una malattia intestinale nota come isosporiasi. Questi parassiti rappresentano una minaccia sia per l’uomo (in particolare per gli individui immunodepressi) che per gli animali. L’ospite viene infettato dall’ingestione di ovociti e l’infezione si presenta principalmente con sintomi gastrointestinali (diarrea acquosa). Secondo la letteratura, scarafaggi, mosche domestiche e scarabei stercorari possono agire come vettori meccanici di Isospora spp. [ 69 , 70 ]. Nel nostro studio, gli allevamenti di insetti sono stati contaminati da questo protozoo, che potrebbe essere la causa della coccidiosi ricorrente negli insettivori. Isospora spp. sono stati rilevati sulla superficie del corpo e nel tratto intestinale degli insetti. A nostro avviso, la presenza diIsospora spp. negli insetti commestibili deriva da scarse norme igieniche negli allevamenti di insetti.
Balantidio spp. sono protozoi cosmopoliti della classe Ciliata. Alcune specie costituiscono la flora commensale degli animali, ma possono anche causare una malattia nota come balantidiasi. Secondo la letteratura, questi protozoi sono ubiquitari negli insetti sinantropici [ 68 , 71 ]. In alcuni insetti Balantidium spp. è considerato parte della normale flora intestinale e può partecipare ai processi digestivi [ 72 ]. Gli insetti possono essere vettori di Balantidium spp. patogeno per l’uomo e gli animali [ 73 ]. Nel nostro studio, sono stati rilevati ciliati potenzialmente patogeni anche in allevamenti di insetti con habitat chiusi.
Entamoeba spp. sono ameboidi del gruppo tassonomico Amoebozoa che sono parassiti interni o commensali nell’uomo e negli animali. La maggior parte delle Entamoeba spp., tra cui E. coli , E. dispar ed E. hartmanni , identificate nel nostro studio appartengono alla microflora intestinale commensale non patogena. Tuttavia, nello studio presentato sono stati rilevati anche E. histolytica patogeno [ 74 ] ed E. invadens . Entamoeba histolytica può causare dissenteria nell’uomo e negli animali, mentre E. invadens è particolarmente pericoloso per animali insettivori come rettili e anfibi. Altri autori lo hanno dimostratoE. histolytica è trasmessa dagli insetti nell’ambiente naturale [ 68 , 75 ].
I Cestoda colonizzano gli insetti come ospiti intermedi. I cisticercoidi, lo stadio larvale di tenie come Dipylidium caninum , Hymenolepis diminuta , H. nana , H. microstoma , H. citelli , Monobothrium ulmeri e Raillietina cesticillus , sono stati identificati negli insetti [ 76-78 ]. Gli insetti hanno sviluppato meccanismi immunitari che inibiscono lo sviluppo di questi parassiti [ 78 , 79 ]. Le tenie possono indurre cambiamenti comportamentali negli insetti, come una significativa diminuzione dell’attività e un comportamento fotofobico [ 80]. I cambiamenti comportamentali possono indurre gli ospiti definitivi a consumare insetti contenenti cisticercoidi. Il nostro studio ha dimostrato che gli allevamenti di insetti esposti al contatto con animali e gli allevamenti integrati con insetti provenienti da fonti esterne sono a maggior rischio di infezione da tenia. Risultati simili sono stati riportati negli studi sugli insetti sinantropici [ 81 , 82 ]. Nel nostro studio sono stati rilevati sia cisticercoidi che uova, il che suggerisce che gli allevamenti possono essere continuamente esposti a fonti di infezione. Tuttavia, le correlazioni tra gli insetti commestibili e la prevalenza della taeniasi nell’uomo e negli animali non sono mai state studiate in dettaglio. È stato dimostrato che la temperatura influenza in modo significativo lo sviluppo delle larve di tenia negli insetti [ 83 , 84]. A nostro avviso, il mantenimento di una temperatura più bassa negli allevamenti di insetti potrebbe ridurre sostanzialmente il successo riproduttivo delle tenie e gli insetti commestibili potrebbero essere trattati termicamente prima del consumo per ridurre al minimo il rischio di infezione da tenie. I risultati del nostro studio indicano che gli insetti commestibili svolgono un ruolo importante nella trasmissione della tenia agli uccelli, agli animali insettivori e all’uomo.
Faringodonte spp. sono nematodi parassiti che colonizzano animali esotici sia in ambienti selvatici che in cattività [ 85 , 86 ]. Questi parassiti sono più diffusi negli animali domestici in cattività che negli animali selvatici [ 85 , 86 ], che potrebbero essere correlati agli insetti commestibili. Nel nostro studio, gli insetti che avevano avuto precedenti contatti con gli animali erano significativamente più spesso vettori di Pharyngodon spp. i nostri risultati indicano che gli insetti fungono da vettori meccanici per la trasmissione delle forme evolutive del parassita. Il ruolo degli insetti come ospiti definitivi per Pharyngodon spp. non è stato confermato dalla ricerca. Infezioni umane causate da faringodonspp. era stato notato in passato [ 87 ], ma questi nematodi non sono più fattori di rischio significativi di potenziali malattie zoonotiche.
Physaloptera spp. formano cisti nell’emocele dell’ospite circa 27 giorni dopo l’ingestione [ 88 ]. Cawthorn e Anderson [ 89 ], hanno dimostrato che grilli e blatte possono fungere da ospiti intermedi per questi nematodi. Il nostro studio è il primo rapporto in assoluto che indica che Physaloptera spp. può essere trasmesso da vermi della farina e locuste migratorie. Gli insetti possono fungere da vettori nella trasmissione di questi parassiti, in particolare ai mammiferi insettivori. Nonostante quanto sopra, gli ospiti definitivi non sono sempre infetti [ 88 , 89 ]. Gli scarafaggi svolgono un ruolo importante nella trasmissione dei parassiti discussi, compresi i giardini zoologici [ 90]. Uno studio su coleotteri della farina infettati sperimentalmente ( Tribolium confusum ) ha dimostrato che gli spiruridi possono anche influenzare il comportamento degli insetti [ 91 ]. I cambiamenti comportamentali aumentano il rischio che gli insettivori selezionino individui infetti.
Gli Spiruroidea sono nematodi parassiti che richiedono ospiti intermedi invertebrati, come scarabei stercorari o scarafaggi, per completare il loro ciclo di vita [ 92 ]. Nelle cavallette, la Spirura infundibuliformis raggiunge lo stadio infettivo in 11-12 giorni a temperature ambiente di 20-30°C [ 93 ]. La ricerca ha dimostrato che questi insetti sono serbatoi di Spiruroidea nell’ambiente naturale [ 94 ]. Questi parassiti formano cisti nei muscoli degli insetti, nell’emocele e nei tubuli malpighiani. Colonizzano principalmente animali, ma sono state segnalate anche infezioni umane. Secondo Haruki et al. [ 95 ], Spiruroidea può infettare gli esseri umani che consumano accidentalmente ospiti intermedi o bevono acqua contenente larve L3 di Gongylonemaspp. (nematodi della superfamiglia Spiruroidea). La prevalenza di Spiruroidea negli insetti non è mai stata studiata negli insetti dell’Europa centrale. Nel nostro studio, questi nematodi sono stati identificati principalmente in allevamenti che importavano insetti dall’esterno dell’Europa.
Gli acantocefali sono endoparassiti obbligatori del tubo digerente di pesci, uccelli e mammiferi e le loro larve (acantore, acanthella, cistacanto) sono trasmesse dagli invertebrati. La prevalenza di questi parassiti negli insetti selvatici non è mai stata studiata. Negli scarafaggi, specie di Acanthocephala come Moniliformis dubius e Macracanthorhynchus hirudinaceus penetrano nella parete intestinale e raggiungono l’emocele [ 96 ]. La membrana esterna dell’acantore forma protuberanze simili a microvilli che avvolgono le larve allo stadio iniziale [ 97 ]. L’influenza degli acantocefali sulla fisiologia degli insetti è stata ampiamente studiata. La presenza di larve di Moniliformis moniliformis nell’emocele di scarafaggio diminuisce la reattività immunitaria.98 ], che, a nostro avviso, possono contribuire a infezioni secondarie. I vermi dalla testa spinosa influenzano la concentrazione di fenolossidasi, un enzima responsabile della sintesi della melanina nel sito della lesione e intorno ai patogeni nell’emolinfa [ 99 , 100 ]. Non ci sono studi pubblicati che descrivano l’impatto degli acantocefali sul comportamento degli insetti. Uno studio sui crostacei ha dimostrato che le forme di sviluppo di questi parassiti aumentavano significativamente i livelli di glicogeno e diminuivano il contenuto di lipidi nelle femmine [ 101 ]. Anche i vermi dalla testa spinosa compromettono il successo riproduttivo nei crostacei [ 102]. Sono necessarie ulteriori ricerche sugli artropodi per determinare la sicurezza degli insetti come fonti di alimenti e mangimi. Gli acantocefali sono stati rilevati nei rettili insettivori [ 103 ], il che potrebbe indicare che gli insetti possono agire come vettori per la trasmissione di forme di sviluppo parassitarie.
I pentastomidi sono artropodi endoparassiti che colonizzano il tratto respiratorio e le cavità corporee di rettili sia selvatici che in cattività [ 104 ]. La pentastomiasi è considerata una malattia zoonotica, in particolare nei paesi in via di sviluppo [ 105 ]. La presenza di acari, che assomigliano a ninfe pentastomidi durante le osservazioni microscopiche, dovrebbe essere esclusa quando si diagnostica la pentastomiasi negli allevamenti di insetti. Il ruolo degli insetti di ospiti/vettori intermedi di ninfe pentastomidi non è stato ancora del tutto chiarito. Tuttavia, Winch e Riley [ 106 ] hanno scoperto che gli insetti, comprese le formiche, sono in grado di trasmettere i vermi della lingua e che gli scarafaggi sono refrattari all’infezione da Raillietiella gigliolii . Esslinger [ 107 ], e Bosch [108 ], ha dimostrato che Raillietiella spp. affidarsi agli insetti come ospiti intermedi. Il nostro studio ha confermato la possibilità di cui sopra, ma non siamo stati in grado di identificare i fattori che rendono gli insetti selezionati gli ospiti intermedi preferiti. La scelta dell’ospite intermedio è probabilmente determinata dalla specie parassita. Non siamo stati in grado di identificare le ninfe pentastomidi a livello di specie a causa dell’assenza di dati morfometrici dettagliati. I nostri risultati e quelli di altri autori suggeriscono che gli insetti potrebbero essere importanti vettori per la trasmissione di pentastomidi a rettili e anfibi [ 106 , 109 ].
Prevalenza
La prevalenza delle infezioni parassitarie negli insetti è stata studiata principalmente nell’ambiente naturale. Tissen et al. [ 110 ] ha rilevato che il 58,3% degli scarafaggi tedeschi era portatore di nematodi, comprese le uova di Oxyuridae (36,4%), le uova di Ascaridae (28,04%), le larve di nematodi (4,8%), altri nematodi (0,08%) e le uova di Toxocaridae (0,08%) . Nello studio di cui sopra sono state rilevate anche uova di Cestoda (3,5%). Chamavita et al. [ 68 ] ha riportato la presenza di parassiti nel 54,1% delle blatte, tra cui Strongyloides stercoralis (0,8%), Ascaris lumbricoides (0,3%), Trichuris trichuria (0,3%), Taenia spp. (0,1%), Cyclospora spp. (1,3%), Endolimax nano(1,3%), B. hominis (1,2%), Isospora belli (9,6%), Entamoeba histolytica / E. dispar (4,6%), Cryptosporidium spp. (28,1%), Chilomastix mesnilli (0,3%), Entamoeba coli (4,0%), Balantidium coli (5,8%) e Iodamoeba butschlii (0,1%). Parassiti umani specifici come Oxyuridae, Ascaridae, Trichuris spp. e Teniaspp. non sono stati rilevati nel nostro studio, il che suggerisce che gli insetti analizzati non avevano accesso alle feci degli esseri umani infetti. In uno studio sugli scarafaggi selvatici in Iraq, la prevalenza di forme di sviluppo parassitarie era quasi due volte superiore (83,33%) rispetto al nostro studio [ 82 ]. Gli scarafaggi iracheni portavano E. blatti (33%), N. ovalis (65,3%), H. diesingi (83,3%), Thelastoma bulhoe (15,4%), Gordius robustus (1,3%), Enterobius vermicularis , (2%) e Ascaris lumbricoidi (1,3%). A differenza del nostro esperimento, H. diesignera la specie di nematode predominante negli scarafaggi iracheni. Gli autori citati non hanno identificato alcuna forma evolutiva di tenia. Tsai e Cahill [ 111 ] hanno analizzato gli scarafaggi di New York e identificato Nyctotherus spp. nel 22,85% dei casi, Blatticola blattae nel 96,19% dei casi e Hammerschmidtiella diesingi nell’1,9 % dei casi. I risultati del nostro studio suggeriscono che gli insetti commestibili d’allevamento sono meno esposti a determinati parassiti (Ascaridae, Enterobius spp.) patogeni per l’uomo e per gli animali. L’assenza di nematodi e nematodi specifici per l’uomo potrebbe essere attribuita al fatto che gli allevamenti analizzati erano habitat chiusi senza accesso a fonti infettive. Nel lavoro di Fotedar et al. [ 112], la prevalenza dei parassiti è stata determinata al 99,4% negli scarafaggi ospedalieri e al 94,2% negli scarafaggi domestici. La percentuale di scarafaggi infetti era molto più alta rispetto al nostro studio, il che potrebbe indicare che i fattori ambientali influenzano in modo significativo la prevalenza delle specie selezionate di parassiti. Le nostre osservazioni confermano che il rischio di infezioni parassitarie può essere sostanzialmente ridotto al minimo quando gli insetti vengono allevati in un ambiente chiuso. L’elevata prevalenza di forme di sviluppo selezionate di parassiti negli allevamenti di insetti valutati potrebbe essere attribuita a bassi standard igienici e all’assenza di trattamenti preventivi. La fauna parassitaria negli allevamenti di insetti non è mai stata descritta in letteratura su tale scala.113 ]. Questi risultati potrebbero essere attribuiti al fatto che tutti gli insetti esaminati provenivano da un unico ceppo, il che ha contribuito alla ricomparsa di infezioni parassitarie. Osservazioni simili sono state fatte in diversi allevamenti di insetti nel presente studio.
La lavorazione degli insetti commestibili come la cottura o il congelamento può inattivare le forme di sviluppo parassitarie. Thanowitz et al. [ 114 ] riportano che la Teania solium viene uccisa cuocendo il maiale ad una temperatura interna di 65°C o congelandolo a 20°C per almeno 12 ore. Anche l’affumicatura, la stagionatura o il congelamento della carne possono inattivare protozoi come il Toxoplasma gondii [ 115 ]. L’uso delle microonde può essere inefficace [ 115 ]. Sull’esempio di Anisakis simplex , è stato dimostrato che la cottura e il congelamento possono migliorare significativamente la sicurezza alimentare in relazione a questo nematode [ 116 ]. Anche bollire l’insetto per 5 minuti è un processo efficiente per eliminare le Enterobacteriaceae [ 117]. Metodi di conservazione semplici come l’essiccazione/acidificazione senza l’uso di un frigorifero sono stati testati e considerati promettenti [ 117 ]. Tuttavia, è necessaria una valutazione approfondita dei metodi di lavorazione degli insetti, comprese le temperature e il tempo di cottura/congelamento per prevenire possibili infezioni parassitarie. Nonostante i processi di preparazione del cibo, gli allergeni dei parassiti possono ancora essere rilevati [ 116 ].
Gli insetti possono anche essere un vettore/serbatoio batterico, ma attualmente non ci sono dati disponibili per i test batteriologici negli insetti riproduttori. È stato dimostrato che gli insetti possono essere un importante fattore epidemiologico nella trasmissione di malattie batteriche [ 3 ]. Uno dei batteri più importanti trasmessi dagli insetti include Campylobacter spp. [ 118 ] e Salmonella spp. [ 119 ]. Kobayashi et al. [ 120 ] hanno dimostrato che l’insetto può essere anche un vettore di Escherichia coli 0157:H7. Gli scarafaggi a vita libera ospitavano organismi patogeni come Escherichia coli , Streptococcus Group D, Bacillus spp.,Klebsiella pneumoniae e Proteus vulgaris [ 121 ]. Studi in vitro hanno dimostrato che alcune specie di insetti possono essere anche serbatoi di Listeria monocytogenes [ 122 ]. A nostro avviso, ulteriori ricerche dovrebbero concentrarsi anche sulla sicurezza microbiologica dell’allevamento di insetti commestibili.
Poiché l’identificazione dei parassiti si basava su metodi morfologici e morfometrici, ulteriori ricerche molecolari dovrebbero concentrarsi sulla determinazione precisa delle singole specie di parassiti identificati al fine di determinare la reale minaccia per la salute pubblica. I risultati di questo studio indicano che gli insetti commestibili svolgono un ruolo importante nell’epidemiologia delle malattie parassitarie nei vertebrati. Gli insetti commestibili fungono da importanti vettori per la trasmissione dei parassiti agli animali domestici insettivori. Gli allevamenti di insetti che non rispettano le norme igieniche o sono stabiliti in luoghi inadeguati (ad es. case) possono comportare rischi sia diretti che indiretti per l’uomo e gli animali. Pertanto, gli allevamenti che forniscono insetti commestibili devono essere regolarmente monitorati per i parassiti per garantire la sicurezza delle fonti di alimenti e mangimi. La quantità di parassiti è correlata a causare malattie umane e animali, pertanto in futuro dovrebbero essere eseguiti studi quantitativi sull’intensità dei parassiti negli allevamenti di insetti. A nostro avviso, il metodo più affidabile di ricerca quantitativa sarebbe il metodo PCR in tempo reale. Dovrebbero essere sviluppati anche standard di benessere degli insetti e metodi analitici per ridurre al minimo le perdite di produzione ed eliminare efficacemente i patogeni dagli allevamenti.
Ringraziamenti
Gli autori desiderano ringraziare i proprietari di allevamenti domestici e negozi di animali per aver condiviso il materiale di ricerca.
(vi risparmiamo le note per non allungare ulteriormente; chiè interessato può vederle nell’originale:
Renovatio 21 ci ha informato che in Olanda già si “educano” gli scolaretti a mangiare insetti – e a trovarli “deliziosi”:
Bambini olandesi portati a mangiare insetti a scuola: video
Ai bambini olandesi di cento scuole ora servono da mangiare insetti.
Il video di RTV Oost mostra uno specialista in alimentazione a base insetti e un politico olandese che distribuiscono pasti con tarme della farina a scolari di circa 10 anni a Zwolle, che con riluttanza trangugiano il pasto a base di invertebrati.
«Oltre ai deliziosi piatti a base vegetale abbiamo questo sacchetto con tarme della farina» dice il tizio, che distribuisce quindi i vermi ai bambini, che ingollano dopo un conto alla rovescia: «3…2… 1».
L’operazione ripresa fa parte della cosiddetta campagna «Missione avventurosa di assaggio delle proteine», un’iniziativa sviluppata dal gruppo Dutch Food Week e dalla Wageningen University & Research (WUR).
l programma riguarderebbe centinaia di scuole.
L’obiettivo dichiarato della campagna per il consumo di insetti è quello di determinare «cambiamenti comportamentali» nei bambini per abbracciare «cibo sostenibile».
«I bambini delle scuole sono oggi esposti a una nuova esperienza alimentare. Parte di un pacchetto didattico sul cibo sano e sostenibile. È un mezzo collaudato: cambiamenti comportamentali attraverso i bambini (ancora) disinibiti. Perché, se lo apprezzano, allora ha un futuro» scrive RTV Oost , che ha filmato l’evento.
L’Olanda non è il solo Paese dove ciò sta avvenendo. Come riportato da Renovatio 21, abbiamo visto di recente esperimenti di alimentazione a base di insetti perpetrati in Africa dal governo britannico, così come l’approvazione della UE alla vendita di invertebrati terrestri nel suo territorio.
Tuttavia, è curioso che l’Olanda sia proprio il Paese – peraltro 2° esportatore di prodotti agricoli al mondo – dove il governo sta attaccando con più virulenza la sua stessa agricoltura. Come noto, il governo olandese ha imposto una riduzione del 50% delle emissioni di azoto entro il 2030 in conformità con le idee di Davos, sostenendo che il bestiame rappresenta il 40% delle emissioni di azoto nel Paese.
Laddove non c’è carne, ecco che arrivano gli insetti edibili. Anche questa, è una «grande sostituzione»
Di fatto la campagna mondiale per la alimentazione a base di insetti è uno degli sforzi del World Economic Forum, l’organizzazione dell’élite globalista che propugna apertamente il Grande Reset, la riformulazione dell’assetto della società mondiale dove gli interessi e gli ordini delle multinazionali e degli Stati convergono e coincidono perfettamente.
Come riportato da Renovatio 21, grazie anche agli immani investimenti economici di Bill Gates – che compra terreni agricoli, spinge la carne sintetica e l’agricoltura OGM bioingegnerizzata con il CRISPR – è chiaro che è in corso pure un Grande Reset alimentare, che, dopo il golpe farmaceutico avvenuto col COVID, diviene controllo ancora più pervasivo della biochimica di tutta l’umanità.